ویژگی های فنوتیپی و تنظیم ایمنی سلولهای استرومایی مزانشیمی مشتق شده از خون بند ناف اسب
تاریخ انتشار: ﺳﻪشنبه 08 اردیبهشت 1394
| امتیاز:
سلولهای استرومایی مزانشیمی (MSC) چندتوان به دلیل توانایی سلول درمانی و تا حدودی توانایی تعدیل سیستم ایمنی توجه بسیاری را به خود جلب کرده است. هدف از این مطالعه بررسی صحت روش ما در جداسازی سلولهای استرومایی مزانشیمی خون بند ناف (CB) اسب، تعیین ویژگی CB-MSC قبل و بعد از انجماد و ارزیابی فنوتیپ سرکوب کننده سیستم ایمنی آنها بود. ما فرض کردیم که سلولهای استرومایی مزانشیمی به طور مداوم از خون بند ناف اسب قابل جداسازی بوده، نشانگرهای منحصر به فرد و قابل تکرار را بیان کرده و در شرایط آزمایشگاهی تکثیر لنفوسیت ها را مهار می کند. تحقیقات مقدماتی بیان گیرنده شبه Toll (TLR) 3 و 4 تشکیل دهنده سیتوپلاسمی با توجه به ارتباط احتمالی آنها با فنوتیپ ضد یا پیش التهابی سلولهای استرومایی مزانشیمی نیز انجام شد. مارکرهای سطحی برای بیان آنتی ژن و mRNA توسط فلوسیتومتری و واکنش زنجیره ای پلیمراز کمی (qPCR) مورد بررسی قرار گرفتند. خواص تنظیم سیستم ایمنی در سنجش واکنش ترکیبی لنفوسیت مورد بررسی قرار گرفت و بیان TLR3و TLR4 توسط qPCR و ایمونوسیتوشیمی (ICC) اندازه گیری شد. سلولهای استرومایی مزانشیمی خون بند ناف از هر نه نمونه خون بند ناف جداسازی شد. سلولهای استرومایی مزانشیمی خون بند ناف بیان بالایی از CD29، CD44، CD90 داشته و فاقد و یا بیان اندکی از کمپلکس سازگار نسجی (MHC) نوع I، MHC-II، CD4، CD8، CD11a / 18 و CD73 قبل و بعد از انجماد داشتند. CB-MSC تکثیر آزمایشگاهی لنفوسیت ها را مهار کرده و TLR4 را بیان کردند. یافته های ما خون بند ناف را به عنوان یک منبع قابل اعتماد برای سلول های بنیادی مزانشیمی که ارائه کننده ارتباط فنوتیپ مارکرهای سطحی و بیان mRNA است، تایید می کند، و خواص ضد التهابی CB-MSC را نشان می دهد. ارتباط بین TLRs و عملکرد لنفوسیت ها گواهی برای تحقیقات بیشتر است.
PLoS One. 2015 Apr 22;10(4):e0122954. doi: 10.1371/journal.pone.0122954. eCollection 2015.
Phenotypic and immunomodulatory properties of equine cord blood-derived mesenchymal stromal cells.
Tessier L1, Bienzle D2, Williams LB3, Koch TG4.
Abstract
Multipotent mesenchymal stromal cells (MSC) have attracted interest for their cytotherapeutic potential, partly due to their immunomodulatory abilities. The aim of this study was to test the robustness of our equine cord blood (CB) MSC isolation protocol, to characterize the CB-MSC before and after cryopreservation, and to evaluate their immunosuppressive phenotype. We hypothesized that MSC can be consistently isolated from equine CB, have unique and reproducible marker expression and in vitro suppress lymphoproliferation. Preliminary investigation of constitutive cytoplasmic Toll-like receptor (TLR) 3 and 4 expression was also preformed due to their possible association with anti- or pro-inflammatory MSC phenotypes, respectively. Surface markers were assessed for antigen and mRNA expression by flow cytometry and quantitative polymerase chain reaction (qPCR). Immunomodulatory properties were evaluated in mixed lymphocyte reaction assays, and TLR3 and TLR4 expression were measured by qPCR and immunocytochemistry (ICC). CB-MSC were isolated from each off nine cord blood samples. CB-MSC highly expressed CD29, CD44, CD90, and lacked or had low expression of major histocompatibility complex (MHC) class I, MHC-II, CD4, CD8, CD11a/18 and CD73 before and after cryopreservation. CB-MSC suppressed in vitro lymphoproliferation and constitutively expressed TLR4. Our findings confirmed CB as a reliable MSC source provides an association of surface marker phenotype and mRNA expression and suggest anti-inflammatory properties of CB-MSC. The relationship between TLRs and lymphocyte function warrants further investigation.
PMID: 25902064