یک روش ساده، سریع و کارآمد برای جداسازی سلول های بنیادی مزانشیمی از کل بند ناف
تاریخ انتشار: شنبه 24 مرداد 1394
| امتیاز:
گزارش های متعددی در مورد جداسازی ، کشت و شناسایی سلولهای بنیادی مزانشیمی (MSC) از مناطق مختلف آناتومیکی بند ناف (UC) منتشر شده است. بندناف برای استانداردسازی روش های جداسازی سلولهای بنیادی مزانشیمی مناسب است زیرا یک منبع یکنواخت با تعداد بالای MSC می باشد. اگر چه بندناف به عنوان زباله های پزشکی پس از زایمان درنظر گرفته شده است، مسائل اخلاقی برای استفاده از آن باید در نظر گرفته شود. افزایش تقاضا برای سلولهای بنیادی مزانشیمی در طب ترمیمی اولویت دانشمندان را توسعه روش های جداسازی MSC ساخته شده است . چندین گروه تحقیقاتی در حال تلاش برای ارائه تعداد زیاد سلول های بنیادی مزانشیمی با کیفیت بالا هستند. در این مطالعه، ما یک روش ریزنمونه ای / آنزیمی (MEEM) تنظیم شده را برای جداسازی حداکثر تعداد سلول های بنیادی مزانشیمی از کل بندناف ارائه کردیم. این روش برای جداسازی سلول های بنیادی مزانشیمی از مناطق مختلف آناتومیکی بندناف ابداع شد. ما توانستیم 6-10 میلیون سلول بنیادی مزانشیمی را در طول 8 تا 10 روز از کشت اولیه به دست آوریم. پس از 3 پاساژ ما قادر به جداسازی108 ×10 8- سلول طی 28-30 روز شدیم. سلول های بنیادی مزانشیمی جدا شده طی این روش CD73، CD90، CD105 و CD44را بیان کردند، اما نشانگرهای خونسازی CD34 و CD45 یا نشانگر اندوتلیالی CD31 را بیان نکردند. ژن های SOXS2، OCT4 و Nanog در سلول های بنیادی مزانشیمی جدا شده بیان شدند. ظرفیت تمایزی این سلول های بنیادی مزانشیمی به سلولهای چربی و استخوانی کاربرد آنها را در طب ترمیمی برجسته کرد. این روش ساده، قابل تکرار و مقرون به صرفه است. علاوه بر این، این یک روش مناسب برای تولید تعداد زیادی از سلول های بنیادی مزانشیمی با کیفیت بالا از بندناف درکمتر از یک ماه است که برای سلول درمانی در یک فرد 80 کیلوگرمی قابل استفاده است.
Cell Transplant. 2015 Aug 12. [Epub ahead of print]
A Simple, Rapid, and Efficient Method for Isolating Mesenchymal Stem Cells from the Entire Umbilical Cord.
Dehkordi MB, Madjd Z, Chaleshtori MH, Meshkani R, Nikfarjam L, Kajbafzadeh A.
Abstract
Several reports have been published on the isolation, culture and identification of mesenchymal stem cells (MSCs) from different anatomical regions of the umbilical cord (UC). UC is suitable for standardizing methods of MSC isolation because it is a uniform source with high MSC numbers. Although the UC is considered a medical waste after childbirth, ethical issues for its use must be considered. An increased demand for MSCs in regenerative medicine has made scientists prioritize the development of MSC isolation methods. Several research groups are attempting to provide a large number of high-quality MSCs. In this study, we present a modulated explant/enzyme method (MEEM) to isolate the maximum number of MSCs from the entire UC. This method was established for the isolation of MSCs from different anatomical regions of the UC altogether. We could retrieve 6 to 10 million MSCs during 8 to 10 days of primary culture. After 3 passages, we could obtain 8-10x108 cells in 28-30 days. MSCs isolated by this method express CD73, CD90, CD105 and CD44, but they do not express hematopoietic markers CD34 and CD45 or the endothelial marker CD31. The genes SOXS2, OCT4 and NANOG are expressed in isolated MSCs. The capacity of these MSCs to differentiate into adipocytes and osteocytes highlights their application in regenerative medicine. This method is simple, reproducible, and cost-efficient. Moreover, this method is suitable for the production of a large number of high-quality MSCs from an UC in less than a month, to be used for cell therapy in an 80 kg person.
PMID: 26270183