یک پلت فرم غربالگری جدید با توان عملیاتی بالا یک فرمولاسیون بهینه سازی شده سیتوکین را برای تکثیر سلول های پیش ساز خونساز انسانی ارائه کرده است
تاریخ انتشار: یکشنبه 14 شهریور 1395
| امتیاز:
محدودیت های عمده پیوند خون بند ناف خون ساز یعنی دوز سلولی پایین و تاخیر در بازسازی می تواند بوسیله تکثیر ex vivo برطرف شود. تکثیر خون بند ناف تحت کشت های معمولی منجر به تمایز سلولی سریع و از دست رفتن سلول های پیش ساز/بنیادی خون ساز(HSPC) مسئول برای پیوند می شود. در این جا، ما از تکنولوژی کشت ترکیبی سلول ها(CombiCult®)) برای شناسایی فرمولاسیون محیطی که تکثیر سلول های پیش ساز/بینادی خون ساز خون بند ناف CD133+ را پیش ببرد و همزمان ویژگی های ظاهری آن ها را حفظ کند استفاده کردیم. ما نسل دوم اسکرین های CombiCult® را بکار بردیم که از تکنولوژی electro-spraying برای کپسوله کردن سلول های خون بند ناف در بیدهای آلژینات استفاده می کند. نتایج ما پیشنهاد می کند که نه تنها ترکیب بلکه ترتیب اضافه کردن ترکیبات منفرد نیز اثر عمیقی روی تکثیر جمعیت سلول های پیش ساز/بنیادی خونساز خاص دارد. پروتکل های عالی شناسایی شده بوسیله اسکرین CombiCult® برای کشت سلول های پیش ساز/بینادی خون ساز خون بند ناف CD133+ روی داربست های نانوفیبری استفاده شد و تکثیر جمعیت CD34+CD38lo/-CD45RA-CD90+CD49f+ سلول های بنیادی خون ساز و تمایز آن ها به اخلاف خاص تایید شد.
Stem Cells Dev. 2016 Aug 24. [Epub ahead of print]
A novel high throughput screening platform reveals an optimised cytokine formulation for human hematopoietic progenitor cell expansion.
Tarunina M1, Hernandez D2,3, Kronsteiner-Dobramysl B4, Pratt P5, Watson T6, Hua P7,8, Gullo F9,10, Van der Garde M9,11, Zhang Y12, Hook L13, Choo Y14, Watt S9,15.
Abstract
The main limitations of hematopoietic cord blood (CB) transplantation, viz. low cell dosage and delayed reconstitution, can be overcome by ex-vivo expansion. CB expansion under conventional culture causes the rapid cell differentiation and depletion of hematopoietic stem/progenitor cells (HSPC) responsible for engraftment. Here, we use combinatorial cell culture technology (CombiCult®) to identify media formulations that promote CD133+ CB HSPC proliferation while maintaining their phenotypic characteristics. We employed second generation CombiCult® screens that use electro-spraying technology to encapsulate CB cells in alginate beads. Our results suggest that, not only the combination, but also the order of addition of individual components has a profound influence on expansion of specific HSPC populations. Top protocols identified by the CombiCult® screen were used to culture human CD133+ CB HSPCs on nanofiber scaffolds and validate the expansion of the phenotypically defined CD34+CD38lo/-CD45RA-CD90+CD49f+ population of hematopoietic stem cells and their differentiation into defined progeny.
PMID: 27554619