ایجاد روشی جدید برای ذخیره سلول های بنیادی مایع آمنیوتیک
تاریخ انتشار: چهارشنبه 17 خرداد 1396
| امتیاز:
پیشنه و اهداف:
رویکردهای اخیر برای جمع آوری سلول های بنیادی مایع آمنیوتیک انسانی(hAFSCs) نشان می دهد که سلول های کشت شده در یک فلاسک برای دو هفته می توانند برای تحقیقات استفاده شوند. با این حال، hAFSCها می توانند به طور مستقیم از مقادیر اندکی مایع آمنیوتیک که در زمان تشخیص آمینوسنتزی گرفته می شود، بازیابی شوند. هدف این مطالعه تامین این بود که آیا فریز کردن مستقیم سلول های مایع آمنیوتیک قادر به حفظ و بهبود پتانسیل جمعیت سلول های بنیادی است یا خیر.
روش ها: ما پتانسیل hAFSCها را با توجه به زمان بندی فریز کردن، سلول های بدست آمده به طور مستقیم از مایعآمنیتوتیک(نمونه D)و سلول های کشت داده شده در فلاسک پیش از فریز کردن( نمونه C) مقایسه کردیم. توانایی واحد تشکیل دهنده کلونی، تکثیر، مورفولوژی، بیان مارکرهای مربوط به بنیادینگی، پیری، آپوپتوز و پتانسیل تمایز نمونه های Cو Dمقایسه شد.
نتایج:
hAFSCهای جداسازی شده از نمونه های D مارکرهای سلول های بنیادی بنیادی مزانشیمی را تا پاساژهای آخر حفظ کردند، نرخ تکثیر خوبی داشتند و ظرفیت تمایزی مشابه با hAFSCهای نمونه C داشتند. جالب تر این که، فریز کردن مستقیم، غلظت های بالاتری از سلول های مثبت برای مارکرهای سلول های بنیادی پرتوان را بدون تشکیل تراتوما در in vivo را القا کرد.
جمع بندی ها:
این مطالعه نشان می دهد که یک فرآوری حداقل ممکن است برای ذخیره سازی سلول های مایع آمنیوتیک کافی باشد و از پاساژهای آزمایشگاهی قبل از ذخیره سازی و در معرض غلظت های بالای اکسیژن قرار گرفتن سلول ها که روی ویژگی های سلول های بنیادی اثر می گذارد پرهیز شود. این تکنیک ممکن است رویکردی مقرون به صرفه و معقول برای گرفتن مجوز رسمی فرایند تولید بانک های سلولی باشد.
Cytotherapy. 2017 May 29. pii: S1465-3249(17)30569-8. doi: 10.1016/j.jcyt.2017.04.006. [Epub ahead of print]
Development of a novel method for amniotic fluid stem cell storage.
Zavatti M1, Beretti F1, Casciaro F1, Comitini G2, Franchi F3, Barbieri V3, Bertoni L1, De Pol A1, La Sala GB4, Maraldi T5.
Abstract
BACKGROUND AIMS:
Current procedures for collection of human amniotic fluid stem cells (hAFSCs) indicate that cells cultured in a flask for 2 weeks can then be used for research. However, hAFSCs can be retrieved directly from a small amount of amniotic fluid that can be obtained at the time of diagnostic amniocentesis. The aim of this study was to determine whether direct freezing of amniotic fluid cells is able to maintain or improve the potential of a sub-population of stem cells.
METHODS:
We compared the potential of the hAFSCs regarding timing of freezing, cells obtained directly from amniotic fluid aspiration (D samples) and cells cultured in a flask before freezing (C samples). Colony-forming-unit ability, proliferation, morphology, stemness-related marker expression, senescence, apoptosis and differentiation potential of C and D samples were compared.
RESULTS:
hAFSCs isolated from D samples expressed mesenchymal stem cells markers until later passages, had a good proliferation rate and exhibited differentiation capacity similar to hAFSCs of C samples. Interestingly, direct freezing induced a higher concentration of cells positive for pluripotency stem cell markers, without teratoma formation in vivo.
CONCLUSIONS:
This study suggests that minimal processing may be adequate for the banking of amniotic fluid cells, avoiding in vitro passages before the storage and exposure to high oxygen concentration, which affect stem cell properties. This technique might be a cost-effective and reasonable approach to the process of Good Manufacturing Process accreditation for stem-cell banks.
Copyright © 2017 International Society for Cellular Therapy. Published by Elsevier Inc. All rights reserved.
PMID: 28571656