ایجاد و تست یک پروتکل ذوب کردن و رقیق کردن مرحله به مرحله برای واحدهای خون بند ناف فریز شده
تاریخ انتشار: جمعه 19 خرداد 1396
| امتیاز:
پیشینه:
از نظر بالینی حفظ زنده مانی و پتانسیل بالای واحدهای خون بند ناف(CBUs) برای پیوند، طی ذوب کردن مهم است. در حضور پروتکل های استاندارد ذوب کردن، این مطالعه برای توسعه یک روش مشترک(اجماع) در مراکز پیوند و نشان دادن کمبود محلو ذوب دکستران 40 طراحی شده است.
طرحی آزمایش و روش ها:
الیکات های واحدهای خون بند ناف فریز شده با استفاده از محلول ذوب کردن دکستران 40 ذوب شد در حالی که دما و حجم ماده رقیق کننده و روش رقیق سازی دستکاری شد. اثرات این ها روی زیستایی سلول های CD45+ و CD34+ از طریق انکسین V و رنگ آمیزی SYTOX green اندازه گیری شد. پروتکل طراحی شده برای مقایسه دکستران 40 و محلول ذوب کردن PLASMA-LYTE A استفاده شد و در نهایت روی واحدهای خون بند ناف تست شد.
نتایج:
بررسی های مرحله به مرحله منجر به تکوین پروتکلی شد که واحدهای خون بند ناف را در دمای اتاق تا 5 برابر حجم اصلی و با استفاده از دو رقیق سازی متوالی مجزا و با مدت زمان یکسان رقیق می کند. رقیق کننده PLASMA-LYTE A زنده مانی بیشتر از سلول های CD45+ و CD34+در مقایسه با دکستران 40 نشان داد و واحد های شکل دهنده کلونی بیشتری را ریکاوری کرد. با این حال، هر دو رقیق کننده در حفظ ثبات واحدهای خون بند ناف ذوب شده برای 4 ساعت به یک اندازه موثر بودند. علاوه براین، جمعیت های غنی از سلول های بنیادی CD34+CD38- در مقایسه با سلول های بنیادیCD34+CD38+ به آسیب های انجمادی مقاوم تر بودند.
بحث:
پروتکل ذوب کردن ایجاد شده سلول های CD45+ و CD34+ زنده را بیش از آستانه استاندارد احیا می کند و پتانسیل واحدهای خون بند ناف را حفظ می کند. ثابت شد که PLASMA-LYTE A جایگزینی موثر برای دکستران 40 است. در نهایت، باید از رقیق سازی برای حفظ زیستایی سلول های CD45+ پرهیز کرد و دوز سلول های گرافت شونده را به حداکثر رساند.
Transfusion. 2017 Jun 5. doi: 10.1111/trf.14136. [Epub ahead of print]
Development and testing of a stepwise thaw and dilute protocol for cryopreserved umbilical cord blood units.
Pasha R1, Elmoazzen H2, Pineault N1,3.
Abstract
BACKGROUND:
It is clinically important to maintain high viability and potency of umbilical cord blood units (CBUs) for transplantation during thawing. In the absence of a standard thawing protocol, this study was designed to develop one based on the consensus practice of transplant centers and address the shortage of dextran 40 thawing solution.
STUDY DESIGN AND METHODS:
Frozen CBU aliquots were thawed using dextran 40 thawing solution while manipulating temperature and volume of diluent and mode of dilution. The effects of these on CD45+ and CD34+ cell viability were measured through annexin V and SYTOX green staining. The developed protocol was then used to compare dextran 40 and PLASMA-LYTE A thawing solutions and finally tested on whole CBUs.
RESULTS:
Step-by-step investigations resulted in the development of a protocol that thaws and dilutes CBUs with room temperature diluent to five times the original volume using two sequential dilutions separated by equilibration times. PLASMA-LYTE A diluent provided superior viability of CD45+ and CD34+ cells than dextran 40 and recovered more colony-forming units. However, both diluents were equally effective in maintaining stability of the thawed CBU for 4 hours. Moreover, the stem cell-enriched CD34+CD38- subpopulations appeared more resistant to cryoinjuries than their CD34+CD38+ counterpart.
CONCLUSION:
The developed thawing protocol recovers viable CD45+ and CD34+ cells above the standard thresholds and maintains CBU potency. PLASMA-LYTE A for thawing solution proved to be an efficient alternative to dextran 40. Finally, greater dilution should be avoided to maintain the viability of CD45+ cells and maximize graft cell dose.
PMID: 28585228