تمایز سلول های تک هسته ای خون بند ناف به سلول های گرانولوسیتی آزمایشگاهی
تاریخ انتشار: یکشنبه 11 تیر 1396
| امتیاز:
هدف: کشف یک روش بهینه برای تولید سلول گرانولوسیتی از سلول های تک هسته ای خون بند ناف. روش ها: اریتروسیت ها بوسیله هیدروکسی اتیل استارچ رسوب داده شدند. سلول های تک هسته ای از طریق سانتریفیوژ شیب تراکم فایکول جداسازی شدند. محیط های مختلف، مواد افزودنی و مدل های کشت برای القای گرانولوسیت انتخاب شد. مورفولوژی سلولی بوسیله میکروسکوپ مشاهده شد و فتوتیپ سلول بوسیله فلوسایتومتری تشخیص داده شد. بیان CD18 گرانولوسیت بوسیله سنجش ایمنوفلورسنس تست شد و تست فاگوستیتوز نیز انجام شد. نتایج: در مقایسه با گروه تیمار شده با سروم جنین گاوی(FBS)، زیستایی سلولی، تعداد و نرخ تمایز گرانولوسیت ها بوسیلهX-VIVO(TM)15 ترکیب شده با TPO، SCF، G-CSF(اما بدون FBS) بیشتر بود. از نظر موثر بودن و هزینه نیز محیط X-VIVO(TM)15 از محیط SCGM بهتر بود. با استفاده از یک روش دو مرحله ای، تکثیر سلول های بنیادی خون ساز بوسیله القای گرانولوسیتی با X-VIVO(TM)15 ترکیب شده با TPO، SCF و G-CSF ادامه یافت و تکثیر سلولی در روز 21 تقریبا 132 برابر بود. فلوسایتومتری نشان داد که تمایز در حالت دو مرحله ای در مقایسه با حالت القای مستقیم بهتر بود. بیان CD15، (69.60± 1.06) % در برابر(97.73±0.39) % بود. رنگ آمیزی رایت- گیمسا گرانولوسیت های بالغ را نشان داد، ایمنوفلورسنس بیان پروتئین های لیزوزومی CD18 را نشان داد. عملکرد فاگوسیتوزی قوی گرانولوسیت های بالغ با کارایی فاگوسیته کنندگی(51.43±0.05) % نشان داده شد. گرانولوسیت ها توانایی شیموتاکسی را تحت یک فاکتور شیموتاکسیک به نام اینترلوکین8 نشان دادند. جمع بندی: محیط کشت و روش کشت بهینه شده بوسیله القای گرانولوسیت های دارای عملکرد در آزمایشگاه بدست آمد.
Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi. 2017 Jun 14;38(6):532-536. doi: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2017.06.013.
[Mononuclear cells of umbilical cord blood differentiation to granulocyte cell in vitro].
[Article in Chinese; Abstract available in Chinese from the publisher]
Chen L1, Xie XY, Nie JQ, Chen DL, Huang AP, Fang F, Qu MY, Nan X, He LJ, Fan Z, Yue W, Pei XT1.
Abstract
in English, Chinese
Objective: To explore an optimal method for granulocyte cell production from umbilical cord blood mononuclear cells. Methods: Erythrocytes were precipitated by hydroxyethyl starch. Mononuclear cells were isolated through Ficoll density gradient centrifugation. Different media, additives and cultivation model were chosen for granulocyte induction. Cell morphology was observed by microscopy, and cell phenotype was detected by flow cytometry. The CD18 expression of granulocytes was tested by immunofluorescence assay, and phagocytosis test was executed as well. Results: Compared to fetal bovine serum (FBS) treatment group, cell viability, counts and differentiation rate of granulocytes induced by X-VIVO(TM) 15 combined with TPO, SCF, G-CSF but without FBS were superior. And X-VIVO(TM)15 medium was better than SCGM medium at effectiveness and cost. Using two-stage mode of hematopoietic stem cell expansion followed by granulocyte induction with X-VIVO(TM)15 combining TPO, SCF and G-CSF, cell proliferation was nearly 132 times at day 21. Flow cytometry showed that the differentiation was lagged in 2-stage mode than in direct induction mode, CD15 expression was (69.60± 1.06) % vs (97.73±0.39) %; Wright-Giemsa staining demonstrated mature granulocytes; immunofluorescence showed the expression of lysosomal proteins CD18. A strong phagocytic function of mature granulocytes was demonstrated by phagotrophic efficiency of (51.43±0.05) %. And granulocyte had chemotaxis ability under the role of chemotactic factor IL-8. Conclusion: Optimized culture media and cultivation mode are achieved for functional granulocytes induction in vitro.
PMID: 28655099