تکوین و تست یک پروتکل ذوب کردن و رقیق کردن مرحله به مرجله برای واحدهای خون بند ناف فریز شده
تاریخ انتشار: پنجشنبه 26 مرداد 1396
| امتیاز:
پیشینه:
از نظر بالینی حفظ زیستایی بالا و پتانسیل واحدهای خون بند ناف(CBUs) برای پیوند، طی ذوب کردن مهم است. در غیاب پروتکل های ذوب کردن استاندارد، این مطالعه برای یک ایجاد یک پروتکل اجماع شده در مراکز عمومی طراحی شده بود که بتواند کمبودهای ناشی از محلول ذوب دکستران 40 را برطرف سازد.
طراحی مطالعه و روش ها:
واحدهای خون بند ناف فریز شده با استفاده از محلول ذوب دکستران 40 ذوب شد و این در حالی است که دما و حجم حلال و نوع رقیق سازی دستکاری شد. اثرات این عوامل روی زیستایی سلول های CD45+ و CD34+ با استفاده از انکسین V و رنگ آمیزی سبز SYTOX اندازه گیری شد. پروتکل تکوین یافته برای مقایسه محلول های ذوب دکستران 40 و PLASMA-LYTE A استفاده شد و در نهایت روی تمام واحدهای خون بند ناف تست شد.
نتایج:
بررسی های گام به گام منجر به تکوین پروتکلی شد که اجازه ذوب کردن و رقیق کردن واحدهای خون بند ناف یا یک حلال در دمای اتاق تا پنج برابر حجم اصلی را با استفاده از دو رقیق سازی متوالی بوسیله زمان های مشابه می دهد. حلال PLASMA-LYTE A زیستایی برتری را در مقایسه با دکستران40 برای سلول های CD45+ و CD34+ داد و واحدهای کلونی زای بیشتری را ریکاوری کرد. با این حال، هر دو حلال به طور یکسان در حفظ ثبات واحدهای خون بند ناف ذوب شده برای 4 ساعت موثر بودند. علاوه براین، سلول های بنیادی غنی از زیر جمعیت های CD34+CD38- در مقایسه با زیرجمعیت های CD34+CD38+ به آسیب های انجمادی بیشتر مقاوم بودند.
بحث:
پروتکل های ذوب کردن تکوین یافته سلول های CD45+ و CD34+ زنده را بیش از استانه استاندارد ریکاور کرد و پتانسیل واحدهای خون بند ناف را حفظ کرد. PLASMA-LYTE A به عنوان محلول ذوب کردن یک جایگزین موثر برای دکستران 40 بود. در نهایت، از رقیق کردن بیشتر باید پرهیز شود تا زیستایی سلول های CD45+ حفظ شود و دوز سلولی گرافت شده را به حداکثر برساند.
Transfusion. 2017 Jul;57(7):1744-1754. doi: 10.1111/trf.14136. Epub 2017 Jun 5.
Development and testing of a stepwise thaw and dilute protocol for cryopreserved umbilical cord blood units.
Pasha R1, Elmoazzen H2, Pineault N1,3.
Abstract
BACKGROUND:
It is clinically important to maintain high viability and potency of umbilical cord blood units (CBUs) for transplantation during thawing. In the absence of a standard thawing protocol, this study was designed to develop one based on the consensus practice of transplant centers and address the shortage of dextran 40 thawing solution.
STUDY DESIGN AND METHODS:
Frozen CBU aliquots were thawed using dextran 40 thawing solution while manipulating temperature and volume of diluent and mode of dilution. The effects of these on CD45+ and CD34+ cell viability were measured through annexin V and SYTOX green staining. The developed protocol was then used to compare dextran 40 and PLASMA-LYTE A thawing solutions and finally tested on whole CBUs.
RESULTS:
Step-by-step investigations resulted in the development of a protocol that thaws and dilutes CBUs with room temperature diluent to five times the original volume using two sequential dilutions separated by equilibration times. PLASMA-LYTE A diluent provided superior viability of CD45+ and CD34+ cells than dextran 40 and recovered more colony-forming units. However, both diluents were equally effective in maintaining stability of the thawed CBU for 4 hours. Moreover, the stem cell-enriched CD34+CD38- subpopulations appeared more resistant to cryoinjuries than their CD34+CD38+ counterpart.
CONCLUSION:
The developed thawing protocol recovers viable CD45+ and CD34+ cells above the standard thresholds and maintains CBU potency. PLASMA-LYTE A for thawing solution proved to be an efficient alternative to dextran 40. Finally, greater dilution should be avoided to maintain the viability of CD45+ cells and maximize graft cell dose.
PMID: 28585228