یک روش مبتنی بر تماس برای تمایز سلول های بنیادی مزانشیمی انسانی به فنوتیپ سلول اندوتلیالی
تاریخ انتشار: دوشنبه 17 مهر 1396
| امتیاز:
سلول های بنیادی بالغ مانند سلول های بنیادی مزانشیمی(MSCs) دارای توانایی تقویت فرایندهای رگزایی جدید هستند و بنابراین به عنوان یک منبع اتولوگ سلول های پیش ساز به طور گسترده ای استفاده می شوند. با این حال یک خلا بزرگ در اطلاعات موجود در مورد مکانیسم های دخیل در تمایز MSCها به سلول های اندوتلیالی(EC) که برای پوشش عروق خونی مهندسی شده ضروری هستند، وجود دارد. برای پر کردن این خلا، ما سعی در تمایز سلول های MSC انسانی به سلول های اندوتلیالی بوسیله کشت آن ها روی یک لایه فیکس شده به صورت شیمیایی از قبل یا کشت آن ها روی ECM داشته ایم. ما انتظار داشتیم که تماس مستقیم MSC زمانی که روی سلول های اندوتلیالی فیکس شده یا روی ECM آن کشت می شوند، موجب تحریک تمایز به سلول های اندوتلیالی شود. نتایج نشان داد که MSCهای کشت شده روی سلول های اندوتلیالی فیکس شده به صورت شیمیایی یا ECM آن با استفاده از محیط سلول های اندوتلیالی، بیان تقویت شده CD31(یک مارکر برای سلول های اندوتلیالی) را در مقایسه با سایر روش ها نشان می دهد. علاوه براین سلول های بنیادی مزانشیمی کشت شده با محیط سلول های اندوتلیالی یک مورفولوژی شکل کلم بروکلی را در مقایسه با سلول های کشت شده با محیط سلول های بنیادی مزانشیمی نشان می دهند که حاکی از این است که سلول های تمایز یافته به مکمل VEGF محلول و موجود در محیط سلول های اندوتلیالی حساس هستند. نتایج درمان هایی که از سلول های بنیادی مزانشیمی اتولوگ به عنوان منبع سلولی برای تولید سلول های عروقی در مهندسی طیف وسیعی از بافت ها استفاده می شوند را تقویت کرده و تحت تاثیر قرار می دهند.
Cell Biochem Biophys. 2017 Sep 23. doi: 10.1007/s12013-017-0828-z. [Epub ahead of print]
A Contact-Based Method for Differentiation of Human Mesenchymal Stem Cells into an Endothelial Cell-Phenotype.
Joddar B1,2, Kumar SA3, Kumar A3.
Abstract
Adult stem cells such as mesenchymal stem cells (MSC) are known to possess the ability to augment neovascularization processes and are thus widely popular as an autologous source of progenitor cells. However there is a huge gap in our current knowledge of mechanisms involved in differentiating MSC into endothelial cells (EC), essential for lining engineered blood vessels. To fill up this gap, we attempted to differentiate human MSC into EC, by culturing the former onto chemically fixed layers of EC or its ECM, respectively. We expected direct contact of MSC when cultured atop fixed EC or its ECM, would coax the former to differentiate into EC. Results showed that human MSC cultured atop chemically fixed EC or its ECM using EC-medium showed enhanced expression of CD31, a marker for EC, compared to other cases. Further in all human MSC cultured using EC-medium, typically characteristic cobble stone shaped morphologies were noted in comparison to cells cultured using MSC medium, implying that the differentiated cells were sensitive to soluble VEGF supplementation present in the EC-medium. Results will enhance and affect therapies utilizing autologous MSC as a cell source for generating vascular cells to be used in a variety of tissue engineering applications.
PMID: 28942575