یک استراتژی ساده دینامیک برای انتقال سلول های بنیادی به آلوگرافت های عصبی سلول زدایی شده
تاریخ انتشار: شنبه 26 خرداد 1397
| امتیاز:
پیشینه:
اضافه کردن سلول های استرومایی مزانشیمی مشتق از چربی(MSCs) به آلوگرافت های عصبی سلول زدایی شده ممکن است نتایج بازسازی مجدد عصبی را بهبود ببخشد. تکنیک های قبلی که برای کشت سلول استفاده شده است هم برای سلول های بنیادی مزانشیمی و هم برای گرافت عصبی تروماتیک است. یک تکنیک کشت کردن سلول مناسب، قابل اتکا و معتبر، یک گام ضروری برای ارزیابی استفاده کاربردی از گرافت های عصبی سلول زدایی شده تقویت شده با سلول های بنیادی مزانشیمی محسوب می شود. هدف این مطالعه، ایجاد یک استراتژی کشت ساده با یک مدت زمان کشت بهینه بود.
روش ها:
یک بیورآکتور دینامیک برای کشت سلول های بنیادی مزانشیمی انسانی و رتی به صورت مجرا روی آلوگراف های عصبی سلول زدایی شده استفاده شد. زنده مانی سلول ها با استفاده از سنجش MTS ارزیابی شد و توپولوژی سلول ها بعد از کشت نیز بوسیله میکروسکوپ SEM تعیین شد. تراکم و پراکنش سلولی بوسیله سنجش LIVE/DEAD و رنگ آمیز Hoechst در چهار زمان مختلف(ساعت های 6،12،24 و 72) تعیین شد. روایی و پایایی این روش کشت محاسبه شد.
نتایج:
سلول ها در همه زمان ها زنده ماندند و سلول های بنیادی مزانشیمی رشد نمایی(تابعی) را در 12 ساعت اول کشت نشان دادند. کارایی کشت به طور قابل توجهی از 5/79 درصد در 6 ساعت به 2/89 درصد بعد از 12 ساعت از کشت رسید(p = 0.004). معقول بودن هر دوی ارزیابی داخلی(r = 0.97) و ارزیابی بینابینی(r = 0.92) تکنیک بالا بود.
جمع بندی:
این مطالعه، روشی جدید را برای کشت موثر آلوگرافت های عصبی سلول زدایی شده با سلول های بنیادی مزانشیمی توصیف کرده و مورد تایید قرار می دهد. این روش قابل تکرار بود و سلول ها را به صورت یکنواخت روی گرافت می پراکند و منجر به تراتومای ساختار بینا-عصبی آلوگرافت نمی شود. استفاده از این تکنیک کشت معتبر اجازه مقایسه بحرانی نتایج گرافت را می دهد.
Plast Reconstr Surg. 2018 May 22. doi: 10.1097/PRS.0000000000004614. [Epub ahead of print]
A simple dynamic strategy to deliver stem cells to decellularized nerve allografts.
Rbia N, Bulstra LF, Bishop AT, van Wijnen AJ, Shin AY.
Abstract
BACKGROUND:
The addition of adipose-derived Mesenchymal Stromal Cells (MSCs) to decellularized nerve allografts may improve outcomes of nerve reconstruction. Prior techniques used for cell seeding are traumatic to both the MSCs and nerve graft. An adequate, reliable and validated cell seeding technique is an essential step for evaluating the translational utility of MSC-enhanced decellularized nerve grafts. The purpose of this study was to develop a simple seeding strategy with an optimal seeding duration.
METHODS:
A dynamic bioreactor was used to seed rat and human MSCs separately onto rat and human decellularized nerve allografts. Cell viability was evaluated by MTS assays and cellular topology after seeding was determined by SEM microscopy. Cell density and distribution were determined by LIVE/DEAD assays and Hoechst staining at 4 different time points (6, 12, 24 and 72 hours). The validity and reliability of the seeding method were calculated.
RESULTS:
Cells remained viable at all time points, and MSCs exhibited exponential growth in the first 12 hours of seeding. Seeding efficiency increased significantly from 79.5% at 6 hours to 89.2% after 12 hours of seeding (p = 0.004). Both intra-rater (r = 0.97) and inter-rater reliability (r = 0.92) of the technique were high.
CONCLUSIONS:
This study describes and validates a new method to effectively seed decellularized nerve allografts with MSCs. This method is reproducible, distributes cells homogenously over the graft and does not traumatize the intra-neural architecture of the allograft. Utilization of this validated seeding technique will permit critical comparison of graft outcomes.
PMID: 29889737